konspektm1.pdf

Konspekt do ĆwiczeŃ

Fizjologiia RoŚlin

SPIS TREŚCI

str.

Roztwory . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3

Kolorymetria . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4

Kiełkowanie nasion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

śywienie mineralne roślin i gospodarka wodna . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

W p ł y w z a n i e c z y s z c z e n i a ś r o d o w i s k a n a w y b r a n e p r o c e s y

f i z j o l o g i c z n e r o ś l i n . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

Hormony roślinne . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Stres oksydacyjny . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26

Barwniki asymilacyjne . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32

Fluorescencja chlorofilu a jako miara aktywności fotosyntetycznej liści . . . . . 38

Fotosynteza . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43

Oddychanie . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48

ROZTWORY

1. Sporządzanie roztworów

W celu przyrządzenia roztworu o określonym stęŜeniu molowym lub procentowym

naleŜy wyliczoną ilość danej substancji rozpuścić w mniejszej ilości wody (lub

innego rozpuszczalnika) niŜ Ŝądana objętość końcowa , a następnie uzupełnić

w kolbie miarowej lub cylindrze do Ŝądanej objętości.

StęŜenie molowe określa liczbę moli substancji w 1000 ml roztworu

Przykład : Sporządzić 500 ml, 100 mM roztworu sacharozy, masa molowa sacharozy

wynosi 342,30 g

342,30g rozpuszczone w 1000ml = roztwór 1 M

34,23 g ã 1000 ml

x ã 500 ml

X=17,11 g

Do sporządzenia 500 ml, 100 mM roztworu sacharozy naleŜy odwaŜyć 17,11 g

sacharozy, rozpuścić ją w ok. 350 ml wody po czym uzupełnić objętość do 500 ml.

StęŜenie procentowe – jest to liczba gramów substancji (w przypadku procentu

masowoobjętościowego % m/v) lub liczba mililitrów substancji (w przypadku

procentu objętościowego % v/v) rozpuszczona w 100 ml roztworu .

Przykład : Sporządzić 500 ml , 1% (m/v) roztworu sacharozy

1 g sacharozy rozpuszczony w 100 ml = roztwór 1%

1g ã 100 ml

x ã 500 ml

x = 5 g

Do sporządzenia 500 ml, 1% (m/v) roztworu sacharozy naleŜy odwaŜyć 5 g

sacharozy, rozpuścić ją w ok. 350 ml wody po czym uzupełnić objętość do 500 ml.

Przykład : Ile mililitrów 27% (m/v) roztworu NaCl potrzeba do sporządzenia 3000 ml

0,9% roztworu NaCl?

x ml • 27% = 3000 ml • 0,9%

x = 100 ml

NaleŜy 100 ml roztworu 27% uzupełnić do 3000 ml wodą.

KOLORYMETRIA

Kolorymetria jest metodą analizy chemicznej, w której podstawę ilościowego

oznaczania substancji w roztworze stanowi zaleŜność pomiędzy intensywnością

zabarwienia roztworu (absorpcją światła o określonej długości fali) a stęŜeniem

zawartej w niej substancji

Prawo LambertaBeera : absorbancja światła monochromatycznego jest wprost

proporcjonalna do grubości warstwy roztworu i stęŜenia roztworu

Molowy współczynnik absorbcji ( e ) kaŜdej substancji ma charakterystyczną wartość,

stałą dla danej długości fali świetlnej. Z wartości e moŜna obliczyć stęŜenie substancji

w mol/l ze wzoru

C = A / (

• l)

Gdzie: l – grubość warstwy roztworu, C – stęŜenie, A – odczytana absorbancja

UWAGA!

Aby wyliczyć ilość moli substancji na podstawie reakcji kolorymetrycznej naleŜy

znać wartość

, jak i równieŜ objętość badanej próby

KIEŁKOWANIE NASION

Kiełkowanie to zespół procesów zachodzących w nasieniu przygotowujących

zarodek do rozpoczęcia wzrostu i rozwoju siewki.

Kiełkowanie rozpoczyna się, gdy nasienie znajdzie się w warunkach umoŜliwiających

pęcznienie. Polega ono w pierwszej kolejności na imbibicyjnym pobieraniu wody przez

koloidy nasienia, co prowadzi do zwiększenia świeŜej masy i objętości nasion. Zdolne

do kiełkowania są tylko nasiona, których zarodki są Ŝywe i odpowiednio dojrzałe.

Procent Ŝywych, zdolnych do kiełkowania nasion danego zbioru nazywamy zdolnością

do kiełkowania. Wskaźnikiem stopnia Ŝywotności nasion jest energia kiełkowania – tj.

procent nasion kiełkujących w odpowiednio krótkim czasie. Określenie obu tych

wielkości jest istotne dla oceny nasion jako materiału siewnego.

Kiełkowanie jest uwarunkowane czynnikami środowiska zewnętrznego przede

wszystkim dostępnością wody, temperaturą, światłem. W zaleŜności od reakcji na

światło nasiona dzielimy na: fotowraŜliwe dodatnio lub ujemnie lub teŜ nie wykazujące

fotowraŜliwości. Przykładem nasion praktycznie niewraŜliwych na światło są nasiona

rzepaku, natomiast dodatnia fotowraŜliwością charakteryzują się nasiona sałaty

odmiany Grand Rapids.

Regulacja kiełkowania przez środowisko odbywa się za pośrednictwem systemu

fitochromowego. W regulacji kiełkowania nasion uczestniczą hormony takie jak

gibereliny, cytokininy czy kwas abscysynowy.

Podczas kiełkowania zachodzą w nasionach głębokie zmiany biochemiczne

i fizjologiczne. Uwodnienie nasion wzmaga natęŜenie oddychania i aktywność

enzymów zwłaszcza hydrolitycznych, które ulegają aktywacji lub są syntetyzowane de

novo .

Stwierdzono, Ŝe w regulacji syntezy a amylazy – enzymu hydrolizujacego skrobię

w bielmie ziarniaków zbóŜ uczestniczy giberelina.

Celem ćwiczenia jest obserwacja zmian aktywności

amylazy i zawartości skrobi

podczas kiełkowania ziarniaków jęczmienia oraz pęcznienia i hydrolizy skrobi

w bulwach ziemniaka.

Plik z chomika:

Inne pliki z tego folderu:

Inne foldery tego chomika: