Biotechnologia – ćwiczenia 2010/2011
Kolokwium 2. Magdalena Pawełkiewicz 30.11.2010 r.
Transformacja – (definicja mikrobiologiczna wg Griffitha 1929) zmiana fenotypu organizmu przez wprowadzenie obcego DNA do jego genomu;
- zmiana genetycznych właściwości komórki (organizmu) spowodowana pobraniem DNA wyizolowanego z innej komórki i włączeniem go do aparatu genetycznego
Metody transformacji:
Ø bezwektorowe:
§ - elektroporacja (transformacja protoplastów)
§ - PEG (transformacja protoplastów)
§ - mikrowstrzeliwanie
§ - mikroinekcja
§ - wytrząsanie zawiesiny komórek z włóknami szklanymi
§ - wprowadzanie DNA zamkniętego w liposomach
Ø wektorowe:
§ - Agrobacterium tumefaciens
§ - Agrobacterium rhizogenes
Agrobacterium tumefaciens:
· Gramm (-), wolnożyjąca bakteria glebowa nalężąca do rodziny Rhizobiaceae
· Polifag
· Wywołuje chorobę określaną jako rak szyjki korzeniowej (crown gall disease)
· Infekuje rośliny dwuliścienne oraz kilka roślin jednoliściennych np. Asparagus officinalis, Z. mays, T. aestivum
· Plazmid Ti (tumor inducing plasmid) zawierający fragment T-DNA
Agrobacterium rhizogenes:
· Wywołuje chorobę przerostów korzeniowych - włośnikowatość
· Plazmid Ri (Rootinducing plasmid) zawierający fragment T-DNA
Plazmid Ti:
· Plazmid indukujący tumory (ang. Tumor inducing plasmid)
· Wlk. Ok. 200 kpz
· Występuje w komórce w małej liczbie kopi (1-2)
· Replikuje niezależnie od chromosomu bakteryjnego
· Może być przenoszony między komórkami Agrobacterium na drodze koniugacji
T-DNA:
· Obszar przenoszony do komórek roślinnych w postaci ssDNA
· Wyznaczony przez specyficzne 25 nukleotydowe sekwencje graniczne (RB-right border, LB-left border)
· Geny obszaru T-DNA nie ulegają ekspresji w komórkach Agrobacterium
W obszarze T-DNA znajdują się:
· Geny syntezy opin
· Geny syntezy hormonów roślinnych (auksyn i cytokinin)
Opiny – pochodne aminokwasów głównie argininy, żródło C i N dla bakterii; 3 klasy opin: -oktopina, - nopalina, -agropina
Onkogeny – geny syntezy fitohormonów:
Ø Auksyn
· IaaM (monooksygenaza tryptofanu)
· IaaH (hydrolaza indoloacetamidowa)
Ø Cytokinin
· ipt (transferaza izopentylowa)
Transfer T-DNA:
1. Przyczepienie się Agrobacterium do komórek roślinnych
- geny chromosomalne: chvA, chvB, pscA, att
Zranione komórki produkują związki fenolowe chemoatraktanty – np. Acetosyringon (stymulacja genów vir)
2. Przeniesienie T-DNA do komórki roślinnej
- geny wirulencji (vir; 24 geny zgrupowane w 8-u operonach: A, B, C, D, E, F, G, H)
Model przeniesienia i integracji T-DNA
· Nić T przenoszona jest w postaci kompleksu DNA-białko
· Białko na końcu 5’ T-DNA wchodzi w interakcję z roślinnym DNA i nacina je
· Jednoniciowe T-DNA jest przyłączane do jednej nici DNA a powstałe napięcia rozrywają drugą nić
· Końce nici T ligowane z DNA i dosyntetyzowana jest 2 nić komplementarna do nici T
· Często dochodzi do rearanżacji w obszarze
Wprowadzenie DNA do komórki Agrobacterium
· Klonowanie i modyfikowanie DNA dokonuje się w plazmidach E.coli
· Plazmid ze skonstruowanym genem jest przenoszony do Agrobacterium za pomocą:
- koniugacji
- rekombinacji homologicznej
Konstrukcja integrowanego DNA
· Organizacja i orientacja sekwencji DNA (transgenu), która ma być wprowadzona do genomu roślinnego, zależy od tego jakich zmian oczekuje się w roślinie transgenicznej np.: nadekspresja, represja, tkankowo- swoista ekspresja, ekspresja regulowana warunkami środowiska
· Sekwencja DNA musi mieć odpowiednią organizację sekwencji kodującej i regulatorowej
· Konstrukcje zawierają fragmenty genów różnych organizmów i tworzy się je poprzez cięcie specyficznymi enzymami restrykcyjnymi i ligację
Budowa konstrukcji genomowej
· Promotory – sekwencje DNA nieodczytywane, sygnalizujące gdzie trzeba zacząc odczytywanie kodu DNA. Do nich przyłącza się bardzo ważne białko enzymatyczne – polimeraza RNA. To właśnie ono dokonuje syntezy mRNA. Konstytutywne, tkankowo specyficzne, indukowane: chemiczne określonymi warunkami środowiskowymi
· Terminatory – sekwencje DNA nieodczytywane, które dają znak polimerazie RNA w którym miejscu ma zakończyć transkrypcję
Agrobacterium tumefaciens – narzędzie inżynierii genetycznej
Opracowano metody wprowadzenia dowolnego genu do obszaru T-DNA A.tumefaciens, tak aby gen został wprowadzony do komórek roślinnych.
Aby obce geny wprowadzić do obszaru T-DNA należało przekonstruować plazmid Ti.
Analiza procesu integracji T-DNA i wiele innych eksperymentów pozwoliły ostatecznie opracować konstrukcję dwóch wektorów:
· Kointergarcyjnego – sekwencje wprowadzane do genomu roślin są na samym plazmidzie co geny vir (czyli jest to plazmid Ti po rekombinacji z plazmidem pośrednim)
· Binarnego – sekwencje wprowadzane genomu roślin i geny vir są na różnych plazmidach (A.tumefaciens posiada rozbrojony plazmid Ti z obszarem wirulencji i plazmid binarny z obszarem T-DNA)
Przygotowanie pożywek
Dla bakterii
Dla roślin
· Regeneracyjne
· Selekcyjne z antybiotykami
· Antybiotyki są wrażliwe na wysoką temperaturę i dodajemy je do pożywki po sterylizacji – antybiotyki sterylizuje się przez filtrowanie
Otrzymanie roślin do transformacji
· Sterylizacja i wysiew nasion
- dla każdego materiału roślinnego należy dobrać najbardziej właściwe warunki sterylizacji rodzaj, stężenie, czas działania subst sterylizującej. Kompromis: sterylność a uszkodzenie
· Podchloryn – w celu zapewnienia lepszej penetracji czynnika sterylizującego:
- moczenie w alkoholu etylowym; dodanie detergentu
Kiełkowanie
· Nasiona po sterylizacji są umieszczane w płytkach Petriego lub słoikach na pożywkach umożliwiających ukorzenienie się tych roślin
· Wzrost siewek i roślin w kontrolowanych warunkach w fitotronie
Prekultura (kondycjonowanie)
· Kompetencjędo regeneracji i transformacji można zwiększyć w wyniku prekultury na pożywkach.
· Przez co stres spowodowany uszkodzeniem tkanek nie nakłada się na stres wynikający z kokultury.
· Nie zawsze jest korzystne.
Cięcie eksplantatów
· Eksplantaty = materiał roślinny, z którego inicjowana jest kultura.
· Najczęściej są to fragmenty jakiegoś organu.
· Eksplantaty są pobierane z liści i fragmentowane na kawałki o wielkości ok. 5x5 mm.
· Cięcie może odbywać się na szalce w cienkiej warstwie pożywki MS.
Przygotowanie Agrobacterium
· Przeprowadzamy pasaż na płytkach z pożywką YEB i prowadzimy hodowlę w 28oC.
· Po 2 dniach zakładamy płynną kulturę bakterii.
· Wirujemy bakterie.
· Osad bakterii rozpuszczamy w pożywce do inokulacji, którą zalejemy przygotowane i pocięte eksplantaty.
· Inokulum z bakteriami musi mieć odpowiednią gęstość.
Inokulacja – kokultura
· Eksplantaty zalewa się przygotowaną pożywką z bakteriami.
· Czas i zagęszczenie?
· Do zranionych krawędzi „przyczepia” się Agrobacterium i następuje transfer T-DNA do możliwie dużej liczby komórek.
· Im dłuższy czas kokultury tym trudniej wyeliminować bakterie i dłużej trwa stres rośliny.
· Inokulacja i kokultura wzmacniają procesy stresowe eksplantatu.
Elimanacja Agrobacterium
· Po stresie kokultury bakterie powinny zostać jak najszybciej wyeleminowane (potencjał regeneracyjny).
· Stosuje się płukanie eksplantatów w antybiotyku i dodawanie go do pożywki regeneracyjnej.
· Skuteczne stężenia antybiotyków nie są neutralne dla tkanek roślinnych.
· Mimo podawania antybiotyków w kolejnych pasażach, bakterie mogą przetrwać przez cały okres kultury.
Wykładanie eksplantatów na pożywki regeneracyjne i selekcyjne
· Stosowanie czynnika selekcyjnego zaraz po zakończeniu kokultury może zahamować regenerację.
· Selekcja powinna:
- wyeliminować lub osłabić komórki, które nie uległy transformacji
- komórki transgeniczne mają aktywne geny
· I nie powinny negatywnie reagować na antybiotyk ,
· Wybór strategii selekcji zależy od promotora i genu markerowego, reakcji tkanek i sposobu regeneracji.
Regeneracja roślin
· Po 2-3 tygodniach pojawia się kalus na eksplantatach w miejscu zranienia
· Po 6 tygodniach pojawiają się pędy, które są odcinane od kalusa
Ukorzenianie
· Po zregenerowaniu pędów rośliny są gotowe do ukorzeniania i przekłada się je na pożywki do ukorzeniania po 9 tygodniach
...
katarzyna.zajac211